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Strep-Tactin XT（Strep-Tactin 的升級產品）瓊脂糖凝膠 FF 是一種將 Strep-Tactin XT 共價交聯(lián)在瓊脂糖凝膠微球上，形成的生物親和層析分離介質。該純化介質主要用于純化 Strep tag II 或 Twin strep tag 標簽蛋白。Strep tagII 標簽為 8 個氨基酸的小標簽（WSHPQFEK），由于標簽小，僅為 1kDa 左右，一般不影響融合后蛋白質的結構和功能，常用于融合表達蛋白質的檢測和純化。由于 Strep-Tacin XT 對 Strep tag II 標簽具有高度特異性，一步純化就能獲得高純度的蛋白質樣品。Strep tag II 標簽蛋白與凝膠結合后可使用脫硫生物su競爭方式進行洗脫，該洗脫方式比較溫和，對蛋白影響極小。由于 Strep-Tactin 對 Strep tag II 標簽具有很強的吸附能力，在生物su的洗脫過程中不易洗脫，造成洗脫效率較低。可以通過在脫硫生物su洗脫液中添加 25mM NaOH 來提高蛋白回收效率，而添加 NaOH 后會造成 Strep-Tactin從填料上脫落，進而污染純化蛋白。本產品為升級的 Strep-Tactin XT，其可耐受高濃度的 NaOH 洗脫（0.5M），除此外 Strep-Tactin XT 可耐受 1%SDS、6M 尿素，因此使用該填料可以在變性條件下純化標簽蛋白。

儲存：4~8℃可保存 2 年。
保存液：10mM Tris-HCl，pH7.5；100mM NaCl；20%乙醇
實驗用溶液：
(1) 結合緩沖液：根據(jù)自身蛋白性質來定，一般推薦 50mM Tris-HCl(pH8.0), 150mM NaCl（或采用 PBS）
(2) 洗滌液與結合緩沖液相同，一般洗滌 5~20 個柱體積。
(3) 洗脫緩沖液：在結合緩沖液中加入 2.5~3.5mM D-Biotin。或根據(jù)蛋白性質和用途靈活使用其它洗脫條件，如 2.5mMD-Biotin+10mM NaOH；25~50mM NaOH；0.2% SDS：
(4) 柱再生：0.2M NaOH 洗滌 3~5 個柱體積；1M NaCl 洗滌 3~5 個柱體積；PBS 平衡 3~5 個柱體積。

PCR 反應需要使用哪些試劑和設備？

試劑:
模板DNA：PCR反應需要模板DNA，如從細胞、組織、血液中提取DNA等；引物：PCR反應的兩個引物，分別與模板DNA的兩端配對擴增所需的特定區(qū)域，引物也可以合成為TA克隆等過程中使用到的引物；dNTPs：PCR反應中需要四種dNTPs，包括脫氧腺苷酸（dATP）、脫氧胸苷酸（dCTP）、脫氧鳥苷酸（dGTP）、脫氧胞嘧啶酸（dTTP），用于細胞分裂、DNA合成等生物學過程，用于PCR擴增的模板DNA鏈的延伸和擴增；Taq DNA聚合酶：PCR反應需要的聚合酶，一般使用Taq聚合酶，還有一些其他種類的聚合酶如PFU、Phusion等，用于擴增DNA鏈；PCR buffer溶液：對PCR反應具有緩沖作用，調節(jié)反應pH，硫代硫酸氫鹽SDS、小分子有機化合物如甲醛，可增強PCR反應特異性，從而提高反應效率；酶切體系：PCR擴增往往涉及到重組、構建和測序等等實驗步驟，常常需要進行酶切操作。MARK:一種分子量標準，用來判別DNA片段大小的工具。DNA純化試劑盒：用于純化PCR反應產物；
設備：
PCR儀：用于控制反應溫度，保證PCR反應時不同溫度環(huán)節(jié)的嚴格控制；電泳槽：用于分離PCR擴增產物；核酸提取儀：從組織樣本中全自動提取核酸。  這些試劑和設備在PCR分子生物學技術中均是，只有在有序齊全的基礎上，才能進行PCR反應并得出準確結果。

PCR相關基礎實驗：

PCR反應基本步驟一般的聚合酶鏈式反應由20到35個循環(huán)組成，每個循環(huán)包括以下3個步驟：

一、變性：

利用高溫（93-98℃）使雙鏈DNA分離。高溫將連接兩條DNA鏈的氫鍵打斷。在第一個循環(huán)之前，通常加熱長一些時間以確保模板和引物分離，僅以單鏈形式存在。該步驟時間1-2分鐘，接下來PCR儀就控制溫度進入循環(huán)階段。

二、退火或稱接合,復性：

在DNA雙鏈分離后，降低溫度使得引物可以結合于單鏈DNA上。此階段的溫度通常低于引物熔點5℃。錯誤的退火溫度可能導致引物不與模板結合或者錯誤地結合。該步驟時間1-2分鐘。

三、延伸：

DNA聚合酶由降溫時結合上的引物開始沿著DNA鏈合成互補鏈。此階段的溫度依賴于DNA聚合酶。該步驟時間依賴于聚合酶以及需要合成的DNA片段長度。傳統(tǒng)的Taq估計合成1000bp/min、較新的Tbr（來自于嗜熱菌Thermus brockianus）約40秒、商業(yè)公司生產的融合型聚合酶僅需約10-15秒。

PCR反應條件優(yōu)化：

1、變性溫度和時間：

保證模板DNA解鏈是保證整個PCR擴增成功的關鍵。加熱90~95°C, 30~60s，再復雜的DNA 分子也可變性為單鏈。溫度過高或高溫持續(xù)時間過長，可對Taq酶活性和dNTP分子造成損害。

2、復性溫度和時間:

PCR擴增特異性取決于復性過程中引物與模板的結合。復性溫度越高，產物特異性越高。復性溫度越低，產物特異性越低。需根據(jù)引物的Tm值具體設定。

3、延伸溫度和時間:

一般位于Taq酶最適作用溫度70~75°C之間。引物小于16個核苷酸時，過高的延伸溫度不利于引物與模板的結合，可以緩慢升溫到70~75°C。延伸反應時間，可根據(jù)待擴增片段的長度而定，小于1kb, 1min足夠；大于1kb需加長延伸時間。Taq酶可根據(jù)1kb/min增加時間。這里需要注意，延伸時間過長可能出現(xiàn)非特異擴增。因此需要設置恰到好處的延伸時間。

4、循環(huán)數(shù):

其他參數(shù)選定后，PCR循環(huán)次數(shù)主要取決于模板DNA的濃度。理論上說20?25次循環(huán)后，PCR產物的積累即可達到最大值，實際操作中由于每步反應的產率不可能達到100%，因此不管模板濃度是多少，20~30次是比較合理的循環(huán)次數(shù)。循環(huán)次數(shù)越多，非特異擴增增加。

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